SANL30 Técnico en Inmunología

240 Horas
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En el ámbito de la sanidad, los técnicos en inmunología son de primordial importancia ya que conocen todo lo relacionado con los procedimientos que se llevan a cabo en un laboratorio clínico. Así, con el presente curso se pretende analizar las técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y de separación, incluyendo las técnicas de identificación genética, empleadas en los laboratorios de Análisis Clínicos.
DISPONIBLE PRÓXIMAMENTE
EF_172082-2101

UNIDAD DIDÁCTICA 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO

  1. Documentación sanitaria.
  2. - Documentación clínica.
  3. - Documentación no clínica.
  4. Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario.
  5. - Organigramas de centros sanitarios.
  6. - Organigrama de un laboratorio.
  7. - Funciones del personal de un laboratorio.
  8. Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
  9. Gestión de existencias.
  10. - Sistemas de almacenamiento.
  11. - Métodos de valoración de existencias.
  12. - Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
  13. Conservación de equipos.
  14. - Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
  15. - Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
  16. - Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
  17. Aplicaciones informáticas.
  18. - Conocimientos básicos de informática.
  19. - Tipos y estructura de las bases de datos.
  20. - Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
  21. Estadística básica.
  22. - Medidas de tendencia central.
  23. - Medidas de dispersión.
  24. - Representaciones gráficas de resultados.
  25. Información científico_técnica.
  26. - Estructura de presentación de la información científica.
  27. - Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.

UNIDAD DIDÁCTICA 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS

  1. Muestras biológicas humanas:
  2. - Concepto de espécimen y de muestra.
  3. - Características generales de la sangre.
  4. * Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar.
  5. * Uso de sangre en ayunas.
  6. * Utilización de suero o plasma.
  7. * Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error.
  8. * Anticoagulantes.
  9. - Características generales de la orina.
  10. * Sustancias y elementos, formas analizables en muestras de orina.
  11. - Características generales de las heces.
  12. - Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputo y hemocultivos.
  13. Obtención de muestras biológicas.
  14. - Obtención de plasma y suero.
  15. - Recogida de orina.
  16. - Recogida de heces.
  17. Manipulación de las muestras biológicas.
  18. - Sistemas de transporte de las muestras.
  19. - Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
  20. - Centrifugación de las muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
  21. - Conservación de las muestras biológicas.
  22. - Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
  23. Cálculos en la realización de diluciones.
  24. Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.

UNIDAD DIDÁCTICA 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS

  1. Fisiología de la respuesta inmune.
  2. - Inmunidad celular.
  3. - Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
  4. - Reacción antígeno_anticuerpo.
  5. - Sistema de complemento.
  6. - Antígenos de histocompatibilidad.
  7. - Mecanismos de la respuesta inmune.
  8. - Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
  9. Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno_anticuerpo.
  10. - Precipitación en medio líquido.
  11. - Técnicas de precipitación en gel.
  12. - Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
  13. - Técnicas de inhibición de la aglutinación.
  14. - Fijación del complemento.
  15. Inmunoensayos.
  16. - Radioinmunoensayos.
  17. - Enzimainmunoensayos.
  18. - Fluoroinmunoensayos.
  19. - Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
  20. Inmunofluorescencia.
  21. - Microscopio de fluorescencia.
  22. - Fluoróforos.
  23. - Inmunofluorescencia directa.
  24. - Inmunofluorescencia indirecta.
  25. Control de calidad de las técnicas inmunológicas.
  26. - Controles internos y controles externos.
  27. - Programas de control de calidad.
  28. - Coeficientes de variación.
  29. - Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 4. TÉCNICAS DE DETERMINACIÓN DE METABOLITOS EN QUÍMICA CLÍNICA

  1. Estructura, función y metabolismo de las sustancias analizables en el laboratorio de Química Clínica.
  2. - Estructura química y conceptos metabólicos básicos sobre glúcidos, lípidos y proteínas.
  3. - Enzimología clínica.
  4. - Fisiología del equilibrio hidroelectrolítico y ácido_base del organismo.
  5. Espectrofotometría de absorción y dispersión.
  6. - Interacción de la radiación y la materia: absorción y dispersión de luz.
  7. - Ley de Lambert_Beer.
  8. - Transmitancia y absorbancia.
  9. - Componentes de un fotómetro y de un espectrofotómetro.
  10. - Cálculo de las concentraciones mediante el uso de patrones y curvas de calibrado.
  11. - Tipos de autoanalizadores utilizados en Bioquímica.
  12. - Nefelometría y turbidimetría.
  13. Espectrofotometría de emisión y absorción atómica.
  14. - Fundamentos físicos de la fotometría de llama.
  15. - Componentes de un fotómetro de llama.
  16. - Fundamentos físicos de la espectrofotometría de absorción atómica.
  17. - Componentes de un espectrofotómetro de absorción atómica.
  18. - Uso de patrones en la espectrofotometría de absorción atómica.
  19. Técnicas basadas en la detección de potenciales eléctricos.
  20. - Ecuación de Nernst.
  21. - Ecuación de Henderson_Hasselbach.
  22. - Determinación de concentraciones mediante electrodos.
  23. - Tipos de electrodos.
  24. Control de calidad en Química Clínica.
  25. - Controles internos y controles externos.
  26. - Programas de control de calidad.
  27. - Coeficientes de variación.
  28. - Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 5. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN EN BIOQUÍMICA

  1. Electroforesis.
  2. - Fundamento teórico de la separación electroforética.
  3. - Componentes de un equipo de electroforesis.
  4. - Tipos de soporte.
  5. - Preparación de los soportes.
  6. - Aplicación de la muestra.
  7. - Revelado de las placas de electroforesis.
  8. - Densitometría.
  9. Técnicas electroforéticas especiales.
  10. - Isoelectroenfoque.
  11. - Electroforesis en SDS.
  12. - Inmunoelectroforesis.
  13. - Electroinmunodifusión.
  14. Cromatografía.
  15. - Fundamento teórico de las separaciones cromatográficas.
  16. - Clasificación de las técnicas cromatográficas.
  17. - Cromatografía en papel, cromatografía en capa fina y cromatografía en columna.
  18. - Definición y cálculo de los parámetros utilizados en las separaciones cromatográficas.
  19. - Mecanismos de separación.
  20. - Cromatógrafos empleados en HPLC y cromatografía de gases.
  21. Determinación de fármacos y drogas de abuso.
  22. - Tipos/clasificación de fármacos y drogas de abuso.
  23. - Monitorización de fármacos terapéuticos.
  24. - Detección de drogas de abuso.
  25. Control de calidad de las técnicas electroforéticas y cromatográficas.
  26. - Controles internos y controles externos.
  27. - Programas de control de calidad.
  28. - Coeficientes de variación.
  29. - Gráficos de control de calidad.

UNIDAD DIDÁCTICA 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR

  1. Estructura y función de los ácidos nucleicos.
  2. - Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
  3. - El ácido desoxirribonucleico como material genético.
  4. - Desnaturalización del ADN.
  5. - Replicación, transcripción y traducción de la información genética.
  6. - Principios básicos de la regulación genética.
  7. - Alteraciones en el ADN: mutaciones.
  8. Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos.
  9. - Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
  10. - Preparación de las muestras.
  11. - Microfotografías e identificación de los cromosomas.
  12. Técnicas básicas en el diagnóstico molecular.
  13. - Electroforesis de ácidos nucleicos.
  14. - Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
  15. - Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western “blotting”, “Dot Blot” e Hibridación “in situ”.
  16. - Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
  17. - Tecnología del ADN recombinante.
  18. - ADNc.
  19. - Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
  20. - Análisis de secuencias de ADN.
  21. - Transferencia de ADN a células eucariotas.
  22. Aplicación de la genética molecular a:
  23. - Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias.
  24. * Análisis molecular directo e indirecto.
  25. * Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
  26. - Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer).
  27. * Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
  28. * Genes de familia ras.
  29. - Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
  30. - Aplicaciones de la genética molecular en medicina legal y forense.
  • Duración: 240 horas